Une nouvelle interaction découverte dans la régulation du fonctionnement des cellules

Résultat scientifique Bioingénierie

De nombreuses machineries moléculaires, impliquant des protéines spécifiques, gèrent l’état cellulaire. Alors que leurs rôles pourraient sembler très compartimentés, des scientifiques du laboratoire IMoPA, de l’IPHC, du laboratoire Génétique des génomes et de l’IGH ont découvert un nouveau cas d’interaction génétique et physique entre des machineries aux fonctions distinctes. Publiés dans la revue Nature Communications, ces travaux multidisciplinaires montrent l’étendue des régulations contrôlant le fonctionnement cellulaire.

Alors que la recherche fondamentale explore avec de plus en plus d’acuité la myriade d’interactions entre les gènes ou les protéines qui en sont issues, des liens inattendus émergent entre des mécanismes biologiques jusqu’alors étudiés séparément. Les snoRNP sont ainsi de petits complexes moléculaires d’ARN et de protéines qui participent à la formation des ribosomes, les machines cellulaires chargées de décoder l’ARN messager afin de synthétiser des protéines. De son côté, la chromatine est la structure qui compacte l’ADN au sein des cellules. Elle constitue en cela une grande partie des chromosomes et est formée de deux types de protéines : les histones et les non-histones. La structure de la chromatine joue un rôle majeur dans l’expression des gènes : elle est régulée par de nombreux acteurs protéiques qui contrôlent l’accessibilité de l’ADN, et donc la possibilité pour la cellule d’exprimer ou non ses gènes. Des chercheurs et chercheuses du laboratoire Ingénierie moléculaire et physiopathologie articulaire (IMoPA, CNRS/Université de Lorraine), de l’Institut pluridisciplinaire Hubert Curien (IPHC, CNRS/Université de Strasbourg), du laboratoire Génétique des génomes (CNRS/Institut Pasteur) et de l’Institut de génétique humaine (IGH, CNRS/Université de Montpellier) ont découvert l’existence de liens génétiques, physiques et fonctionnels entre des protéines permettant l’assemblage des snoRNP, dont la protéine Bcd1, et des gènes codant une protéine (Rtt106) qui modèle la chromatine.

Afin de mener ces travaux, les scientifiques ont choisi comme modèle la levure Saccharomyces cerevisiae. Comme ce modèle biologique présente des facilités de culture en laboratoire, le criblage génétique permettant d’identifier des gènes a pu être automatisé à haut débit. Après une partie de criblage in vivo, une phase in vitro a aidé à décrire à l’échelon atomique les éléments clés de l’interaction entre les protéines Bcd1 et Rtt106. Fort de ses résultats, de nouvelles hypothèses ont ensuite été testées in vivo, révélant l’existence d’un mécanisme de compétition. L’équipe a ainsi proposé un modèle où l’activité d’une des protéines impliquées dans le remodelage de la chromatine est contrôlée par une protéine chargée de l’assemblage de certaines snoRNP. De tels liens, entre des processus biologiques aussi distincts, sont rarement mis en évidence. Ces travaux renforcent ainsi l’émergence de tout un pan de recherche, qui pourrait aboutir à la découverte de mécanismes de régulation génétique encore inconnus.

Modèle proposé pour le contrôle de l’activité de la protéine impliquée dans l’architecture de la chromatine (chaperonne d’histone Rtt106, en orange) par une protéine intervenant dans l’assemblage des snoRNP de type C/D (Bcd1, en vert). La protéine Rtt106, associée à l’enzyme RNA Polymérase II (RNA Pol II, en bleu) et en interaction directe avec une partie de la protéine histone H3 (H3K56ac, rouge), permet le dépôt sur l’ADN de nouvelles molécules d’histones acétylées dans le sillage de la RNA Pol II en cours de transcription. Si la protéine Bcd1 est disponible, elle limite le recrutement de Rtt106 par l’ARN Pol II et donc diminue le remodelage de la chromatine à la suite du passage de la polymérase. © Bragantini et al.
Modèle proposé pour le contrôle de l’activité de la protéine impliquée dans l’architecture de la chromatine (chaperonne d’histone Rtt106, en orange) par une protéine intervenant dans l’assemblage des snoRNP de type C/D (Bcd1, en vert). La protéine Rtt106, associée à l’enzyme RNA Polymérase II (RNA Pol II, en bleu) et en interaction directe avec une partie de la protéine histone H3 (H3K56ac, rouge), permet le dépôt sur l’ADN de nouvelles molécules d’histones acétylées dans le sillage de la RNA Pol II en cours de transcription. Si la protéine Bcd1 est disponible, elle limite le recrutement de Rtt106 par l’ARN Pol II et donc diminue le remodelage de la chromatine à la suite du passage de la polymérase.
© Bragantini et al.

Références
The box C/D snoRNP assembly factor Bcd1 interacts with the histone chaperone Rtt106 and controls its transcription dependent activity.
B. Bragantini, C. Charron, M. Bourguet, A. Paul, D. Tiotiu, B., Rothé, H. Marty, G. Terral, S. Hessmann, L. Decourty, ME. Chagot, JM. Strub, S. Massenet, E. Bertrand, M. Quinternet, C. Saveanu, S. Cianférani, S. Labialle, X. Manival, B. Charpentier.
Nature Communications 2021 March 25.

https://doi.org/10.1038/s41467-021-22077-4

Contact

Bruno Charpentier
Professeur de l’Université de Lorraine, Ingénierie Moléculaire et Physiopathologie Articulaire (IMoPA, CNRS/Université de Lorraine)
Stéphane Labialle
Maître de conférence de l’Université de Lorraine, Ingénierie Moléculaire et Physiopathologie Articulaire (IMoPA, CNRS/Université de Lorraine)
Xavier Manival
Directeur de recherche CNRS, Ingénierie Moléculaire et Physiopathologie Articulaire (IMoPA, CNRS/Université de Lorraine)
Communication CNRS Ingénierie